在动脉粥样硬化的体外机制探究工作中，氧化低密度脂蛋白是核心实验材料，它是天然低密度脂蛋白发生氧化修饰之后形成的产物，和单纯化学修饰得到的衍化类脂蛋白存在诸多生物学层面的区别，很多细胞炎症、脂质沉积、泡沫细胞形成的相关实验，都依赖
氧化低密度脂蛋白构建体外细胞模型，模拟体内病理状态下脂蛋白的变化过程。
天然的低密度脂蛋白由极低密度脂蛋白，经过脂蛋白脂肪酶作用消耗部分甘油三酯转化生成，在人体循环系统中承担胆固醇转运工作。一旦发生氧化修饰，氧化低密度脂蛋白便不再依靠经典LDL受体完成代谢，转而被细胞表面清道夫受体识别、内吞进入胞内，会打乱细胞原本胆固醇代谢通路，促使胞内脂质堆积，推动泡沫细胞的生成，这也是血管斑块发生发展过程中十分关键的环节。
从细胞生理反应层面对比，氧化低密度脂蛋白可以诱导细胞毒性，改变花生四烯酸代谢路径，同时抑制胞内胆固醇酯化过程，而像丙二醛修饰这类衍化LDL，一般不会产生上述细胞效应。氧化过程还会消耗脂蛋白颗粒内部自带抗氧化物质，造成颗粒内部维生素E水平下降，脂质组分当中多不饱和脂肪酸会发生脂质过氧化；反观MDA修饰的脂蛋白，仅发生ApoB‑100蛋白共价结合，脂质过氧化程度很低。两种修饰产物蛋白变化也不一样，氧化低密度脂蛋白会随氧化程度变化，出现ApoB蛋白降解，或是高氧化条件下蛋白重新聚合，MDA修饰的脂蛋白不会出现蛋白降解和聚合现象，两者荧光特征峰位置同样存在区别，氧化低密度脂蛋白荧光峰处于430nm，MDA‑LDL则为460nm，这些特征也可以辅助科研人员区分不同修饰类型的脂蛋白样本。
市面商品化的氧化低密度脂蛋白多来自人源血浆，会通过TBARS检测体系，借助MDA含量来量化氧化程度，同时开展内毒素控制，还会利用表达SR‑A受体的细胞完成生物活性验证，确认样本可以被清道夫受体介导完成内吞。样本采用冰袋运输，保存条件为4℃避光，严禁冻存。长期存放若析出沉淀，低速1000g离心2‑3分钟去除沉淀即可，稀释后的工作液稳定性差，必须现配现用。实验全程做好个人防护，佩戴手套，规避人源生物材料带来的潜在风险。科研人员根据课题需要，还可以选择不同氧化程度的产品，适配从代谢机制到细胞损伤的各类体外研究方向。
